O laboratório de Parasitologia Veterinária presta diversos serviços para a comunidade de Santa Maria e Região. São realizados:
-Exame parasitológico de fezes de animais de companhia, animais silvestres e grande animais.
-Identificação de ácaros como sarnas e carrapatos.
-Identificação de insetos parasitos como larvas e adultos de moscas e mosquitos, piolhos e pulgas.
-Pesquisa e identificação de nematoides parasitos.
-Pesquisa e identificação de cestoides parasitos.
-Pesquisa e identificação de trematoides parasitos.
–Pesquisa de protozoarios.
-Biocarrapaticidograma.
-Pesquisa de parasitos em água e esgoto.
-Identificação de animais peçonhentos.
Como coletar e enviar corretamente o material para exame:
Carrapatos para Biocarrapaticidograma
Teste de Resistência do carrapato
Procedimento:
1 – Número de carrapatos: 100 fêmeas ingurgitadas acondicionadas em vidro ou caixa limpos e secos
2 – Para teste de resistência remeter 20 fêmeas nas mesmas condições
3 – Tempo para chegar no laboratório: 1 dia após a coleta ou 3 dias deixando em geladeira
4 – Remeter em caixas isotérmicas contendo gelo reciclável.
Exemplares de helmintos para identificação
Procedimento:
Os nematódeos devem ser encaminhados em formol a 5% ou A.F.A.
Esfregaço sanguíneo
Procedimento
1-Coleta de sangue superficial do lóbulo de orelha ou ponta de cauda (não puncionar locais edematosos ou congestos).Recomenda-se realizar os esfregaços a campo (temp.ambiente entre 11ºC e 27ºC)
2-Limpar o local com álcool ou éter
3-Utilizar agulha ou lanceta para realizar a punção
4-Coletar a primeira gota
Preparo dos esfregaços:
1-Utilizar lâminas finas, limpas, secas e desengorduradas
2-Segurar a lâmina horizontalmente entre os dedos polegar e indicador
3-Colocar uma gota pequena de sangue na extremidade direita da lâmina
4-Com a outra mão, segurar outra lâmina (ou lamínula) contra o sangue formando um ângulo de 45º
5-Deslocar a lâmina da direita para a esquerda em um só movimento, firme, porém suave e uniforme, preservando o ângulo inicial entre as duas lâminas
6-Secar ao ar, agitando a lâmina. Enviar as lâminas identificadas individualmente e separadas por palitos. Embrulhar as lâminas em papel (sulfite, manteiga ou higiênico).
7-As amostras devem chegar ao laboratório no máximo em 24 horas.
Órgãos para Pesquisa e Identificação de Helmintos
Procedimento
1 – As vísceras devem ser embaladas separadamente (pulmão, fígado, pâncreas, intestino delgado, intestino grosso, abomaso ou estômago). Os intestinos delgado e grosso como também o abomaso ou estômago devem ser enviados com as duas extremidades amarradas, para se evitar que o conteúdo de disperse.
2 – No caso de exames para cisticercose remeter língua e fragmentos de musculatura estriada que apresentem lesões
3 – Embalar os materiais separadamente em sacos plásticos ou frascos limpos e secos.
4 – Remeter em caixas isotérmicas contendo gelo reciclável
Fezes para exames parasitológicos
Procedimento
1 – Fezes colhidas preferencialmente diretamente da ampola retal, evitando-se assim contaminações do solo e urina.
2 – No caso de rebanhos, recomenda-se colher amostras de 10% dos animais, levando-se em conta as diferentes faixas etárias.
As fezes devem ser colocadas em frascos de vidro ou plástico, limpos, secos, de boca larga e com tampa.
Pode-se usar também sacos plásticos, que geralmente são utilizados como luvas durante a colheita das fezes. As amostras devem ser identificadas com etiquetas.
Volumes de fezes necessárias para a realização dos exames coproparasitológicos:
– Bovídeos: 100 g
– Ovinos e caprinos: 20 a 40 cíbalas
– Eqüinos: 2 a 3 cíbalas
-Suínos: 40 g
As amostras devem ser remetidas em caixa de isopor contendo gelo reciclável , chegando ao laboratório no máximo em 48 horas.
Exemplares de Artrópodes
Procedimento:
Encaminhar os insetos e/ou ácaros vivos ou conservados em álcool 70%.
Água e esgoto
Coletar a agua da torneira ou resíduo de esgoto em garrafa pet de 500ml. Enviar no mesmo dia ou manter em refrigeração e enviar em até 48 horas.
Raspado de pele
Procedimento
1 – Limpar a região com álcool 70º
2 – Fazer uma dobra na pele, colocar uma gota de óleo e com o uso de um bisturi (lâmina estéril) raspar a pele até a sua escoriação e pequeno sangramento.
3 – Colher amostras de várias regiões com lesões
4 – Recolher as amostras entre duas lâminas , vedar com filme plástico PVC.
5 – Remeter em temperatura ambiente
Observar para que a colheita de material seja feita após a interrupção de qualquer tratamento por pelo menos 72 horas. Envio no máximo em 48 horas